domingo, 16 de agosto de 2020

Virus del Nilo Occidental (A92.3X)


Es un virus del género Flavivirus y familia Flaviviridae.



Su Pincipal vector es el mosquito de la especie Culex pipiens, donde el virus se mantiene en sus poblaciones mediante el ciclo mosquito-ave-mosquito y también por transmisión vertical (de adultos a los huevos).


El reservorio original son las aves. El virus se ha detectado en más de 250 especies y éstas pueden infectarse por vías distintas a la picadura de mosquito. Aunque en Europa, África, Oriente Medio y Asia, la muerte de aves por este agente es rara, el virus es muy patogénico en aves americanas.


La infección del ser humano y mamíferos superiores (s.t. equinos), suele darse por picaduras de mosquitos que previamente han picado a aves contagiadas. También puede contraerse por contacto directo con animales infectados, su sangre o sus tejidos.


Hasta la fecha no se ha confirmado ningún caso de transmisión de persona a persona (hospedador final).



ANTERIORES BROTES

El virus se aisló por primera vez en una mujer de Uganda en 1937 y en 1953 se determinó su origen cuando se identificó en aves del delta del Nilo.


Originalmente, el virus del Nilo era prevalente en toda África, Oriente Medio, Asia occidental, Australia y en regiones de Europa que formaban parte de las rutas migratorias de las aves.


En 1999, una cepa que circulaba por Túnez fue importada a Nueva York y produjo un espectacular brote epidémico que se propagó desde Canadá hasta Venezuela. También se han producido grandes epidemias en Israel, Grecia, Rumania y Rusia.


CUADRO CLÍNICO

  • A92.30. La infección es asintomática en el 80% de los casos. En el resto, la persona suele padecer fiebre, cefalea, astenia, dolores musculares, náuseas, vómitos y, a veces, erupción cutánea en tronco e inflamación de ganglios linfáticos.
  • A92.31 y A92.32 (forma grave): enfermedad neuroinvasora, encéfalo-meningitis o poliomielitis del Nilo Occidental - suele cursar con cefalea intensa, fiebre elevada, signos de irritación meníngea, estupor, desorientación, temblores, convulsiones, debilidad muscular, parálisis y coma. Esta forma supone menos del 0´7 de los casos
El periodo de incubación dura entre 3 y 14 días.

DIAGNÓSTICO

  • Captación de anticuerpos IgG en dos muestras extraídas con un intervalo de una semana mediante enzimoinmunoanálisis (ELISA).
  • Detección del virus mediante RT-PCR (reacción en cadena de la polimerasa con transcripción inversa).
  • Aislamiento del virus en cultivo celular.

Las inmunoglobulinas IgM pueden detectarse en muestras de LCR y en suero extraído de pacientes sintomáticos hasta un año después de padecer la enfermedad.


TRATAMIENTO Y VACUNA


El tratamiento de los pacientes con afección neuroinvasora consiste en medidas de soporte, líquidos por vía IV, apoyo respiratorio y prevención de sobreinfecciones. Actualmente, no existe vacuna para humanos, aunque sí para caballos.


PREVENCIÓN


Control del vector, como en todas las enfermedades transmitidas por artrópodos:
  • Evitar sus hábitats.
  • Eliminar los lugares donde los mosquitos depositan los huevos.
  • Vaciar y limpiar periódicamente los depósitos de agua para uso doméstico.
  • Empleo de insecticidas.
  • Utilizar mosquiteros en ventanas y ropa de manga larga.

Medidas de contención biológica adecuadas en centros o laboratorios debidamente equipados para el personal sanitario que atiende a pacientes infectados o que manipula muestras o tejidos obtenidos de estos.


Post relacionado: la cadena de transmisión

lunes, 3 de agosto de 2020

Sistema de drenaje torácico (Pleurevac®)


Es un sistema de drenaje torácico con sello de agua, que tiene como finalidad drenar líquido, aire o sangre del espacio interpleural, normalizando su presión y favoreciendo la reexpansión de pulmones colapsados. Indicado en:

  • Neumotórax simple y a tensión.
  • Hemotorax, hemoneumotórax.
  • Intervenciones mediastínicas.
  • Toracotomías.
  • Derrames pleurales.
  • Quilotórax y empiema.

FUNCIONAMIENTO

El pleur-evac tiene tres cámaras:

  1. Cámara de recolección de aire y/o líquido.
  2. Sello de agua. Esta cámara actúa como una válvula unidireccional, que permite salir el aire del espacio pleural e impidiendo que vuelva a entrar. Lleva un colorante azul que, mezclado con el agua, facilita la visualización del nivel y las fugas de aire. Rellenar con 2 cm de agua estéril.
  3. Cámara de control de aspiración, es la que regula la presión de aspirado añadiendo o eliminando agua. Llenarla con 20 cm (generalmente).
El sistema se conecta al tubo de tórax del paciente y a la toma de vacío. Al ponerlo en marcha, la cámara de control de aspiración debe burbujear suavemente.

CUIDADOS DE ENFERMERÍA

  • Anotar la fecha y hora de inicio del drenaje.
  • No elevar el pleur-evac por encima del paciente, pues el líquido drenado volverá a entrar en la cavidad pleural. Ponerlo siempre en posición vertical.
  • El agua de la cámara de control de aspiración, suele evaporarse. Rellenarla para que no disminuya la presión de aspiración.
  • Vigilar la presencia o ausencia de fluctuaciones en el sello de agua. Debe fluctuar mientras el paciente inspira o espira. La ausencia de fluctuación indica obstrucción en el sistema por un coágulo o un codo. No fluctúa cuando el tubo está colocado en el mediastino.
  • El burbujeo continuo en la cámara de sello de agua, puede indicar fuga de aire en el tórax o en el sistema de drenaje. Comprobar que no haya conexiones flojas, pérdidas en el sistema y que el tubo esté en su sitio.
  • Vigilar la permeabilidad de los tubos y evitar acodamientos.
  • Medir la cantidad y el aspecto del contenido de la cámara colectora. Anotándolo en el registro de enfermería.
  • Ordeñar los tubos cada 8 horas. Se realiza sujetando el tubo con el índice y pulgar de una mano y deslizando los mismos dedos de la otra mano a lo largo del tubo desde arriba hacia abajo. El ordeño mantiene el drenaje permeable y libre de coágulos y de restos de fibrina.
  • También se puede ordeñar con una pinza que suele trae el tubo. No olvidar soltarla.
  • Nunca dejar los tubos pinzados, ya que se puede producir un neumotórax.
  • En caso de pacientes con neumectomía, nunca aspirar, ya que las estructuras del lado contrario pueden desplazarse.
  • Vigilar en todo momento el estado respiratorio del paciente.
  • Cuidados de la zona de punción y herida quirúrgica. La incisión suele estar entre el 4º y 5º espacio intercostal. Lavarla cada 24 horas con SF y aplicar clorhexidina. La herida quirúrgica puede mantenerse al aire si no hay indicación en contra.

COMPLICACIONES

  • Desconexión del tubo al sistema de drenaje. Volver a conectar. Si no se pudiese hacer en ese momento, pinzar el tubo del tórax hasta que el problema se haya resuelto.
  • Salida del tubo del tórax. Tapar rápidamente el orificio de entrada con un apósito oclusivo y se avisar al cirujano que pedirá RX de tórax.
  • Sangrado por la zona de punción. Cambiar el apósito poniendo uno más compresivo. Si el sangrado persiste, avisar al cirujano.
  • Avisar también si hubiese un drenado de sangre superior a 1000 ml/dia.
  • Vuelco del pleur-evac. Si no se han mezclado los líquidos, reponer las cámaras de agua. Si se han mezclado, cambiarlo.
  • Torsión del pleurecath. En este caso hay que pinzar, desconectar, cortar la porción torcida, volver a conectar y despinzar.

TRASLADO DE UN PACIENTE CON PLEUR-EVAC


  • Desconectar el sistema de la toma de vacío.
  • Llevar la unidad por debajo del tórax del paciente sin pinzarlo.
  • El drenaje pleural no condiciona la posición del paciente, que podrá estar tumbado, sentado o deambular.

RECOGIDA DE MUESTRAS

  • Con pleurecath: sacar la muestra de la llave de tres pasos.
  • Con tubo torácico: pinchar con una jeringa y una aguja en la zona del tubo que tenga más declive y contenga suficiente líquido, previa desinfección. El tubo volverá a quedar sellado.
  • Se puede sacar la muestra de la cámara de recolección pero está desaconsejado porque suele ser más antiguo y estar contaminado

ADMINISTRACIÓN DE MEDICACIÓN ATRAVÉS DEL TUBO PLEURAL


  • En el caso de un tubo pleural: clampar, desconectar el tubo de drenaje, conectar la jeringa con la medicación, inyectar y volver a conectar, dejando clampado el tubo durante una hora. Después desconectar y ordeñar.
  • Si se trata de pleurecath: inyectar la medicación por la llave de tres pasos con una jeringa siguiendo los pasos anteriores.

CUANDO Y COMO CAMBIAR EL PLEUREVAC


  • Se cambia cuando está lleno o su contenido esté muy sucio o contaminado.
  • Para cambiarlo, pinzar el tubo pleural y desconectar todo el sistema, reemplazándolo por otro.
  • Anotar siempre la cantidad y el aspecto del contenido.
  • Asegurarse de no dejar el tubo pinzado.